가. 세포병리

01준수사항

• 01 세포병리 검사용 검체는 세포 변성을 방지하기 위해 95% 에탄올로 반드시 고정합니다.
• 02 95% 에탄올로 고정하는 경우 적어도 30분 이상 고정해야 합니다.
• 03 95%에탄올 고정액은 2~3일에 한번씩 교체 해주어야 합니다.

02검체별 채취방법

• 01 부인과 세포검사(gynecological cytology)와 자궁내막 세포검사(endometrial cytology)
• • ① 채취부위: 자궁질부(portio vaginalis), 자궁경부(uterine cervix), 자궁내막(endometrium)
  • ② 부인과 검체의 경우 자궁 경부의 변형대(Squamo-Columnar junction)이나 질의 후원개 (Vaginal posterior fornix)에서 brush로 돌리면서 채취합니다.
  • ③ 검체채취 시 기구나 장갑에 윤활제 또는 탈컴파우더(talcum powder)를 사용하지 않고, 수분이 필요한 경우는 따뜻한 생리식염수(warm saline)를 사용합니다.
  • ④ 검체는 cyto brush를 이용하여 한 번에 많이 채취한 후 슬라이드에 얇고 균일하게 도말하고, 도말 즉시(0.5초의 지체없이) 95% 에탄올에 고정하거나(최소 30분 이상) 세포 고정제를 분무합니다.
  • ⑤ 검체채취 하루 전에는 질 내 치료나 피임약제 등의 사용을 하지 않아야 하며, 채취 전 외상 치료나 biopsy등을 행하면 혈액의 RBC가 슬라이드에 도말되어 판독이 어려워 집니다.
  • ⑥ Pap brush나 cyto brush로 검체를 채취할 경우 심한 출혈이 발생하지 않도록 주의합니다. (과도한 혈액 혼입은 진단에 방해를 줄 수 있습니다)
  • ⑦ 면봉은 사용하지 않습니다.
  • ⑧ 액상세포 검사용기를 사용하는 경우 cyto brush로 채취한 모든 세포를 액상용기 안의 액체에 풀어 넣은 다음, 새지 않게 뚜껑을 잘 밀봉하여 보냅니다.
• 02 점액성 검사물 객담 또는 호흡기계 검사물(sputum or respiratory specimen)
• • ① 객담(sputum)세포들이 점액내에 섞여 있는 검사물로서 폐포로부터 나오는 객담을 환자 스스로 받는것이 가장 좋습니다.
  • ② 아침 첫 객담을 받아 병적(변색, 짙은 갈색, 혈액 등) 부분을 두 장의 슬라이드 사이에 넣고, 전·후·좌·우로 비벼 펼친 다음 즉시 95% 에탄올에 고정합니다.
  • ③ 채취 시 타액이 섞이지 않도록 주의하고 객담 자체를 의뢰하실 경우 냉장보관하여 24시간 이내에 본원으로 보냅니다.
• 03 요, 뇌척수액(urine, CSF) 등 protein양이 적은 검체
• • ① 요의 경우 채뇨 시 중간뇨를 소변컵에 절반 이상 받습니다.
  • ② 아침 첫뇨는 퇴행성 변화가 심하고 농축되어 적당하지 않습니다.
  • ③ 1,500rpm에서 10분간 원심분리하여 침전물을 슬라이드에 도말한 후 고정합니다.
  • ④ 원심분리가 불가능할 경우 검체에 50% 에탄올(ethyl alcohol)을 검체의 양과 같은 양으로 혼합하여 보냅니다.
• 04 체액(body fluid)
• • ① 흉수액(pleural fluid), 복수액(ascitic fluid), 심낭액(pericardial fluid) 등을 의미합니다.
  • ② 채취 부위에 천자 바늘을 삽입하며 위치가 확인되면 고정하고 수액 set를 연결하여 빈병에 배액되게 합니다.
  • ③ 검체에 에탄올이나 포르말린을 섞어서는 안됩니다.
  • ④ 가능한 전량을 1,500rpm에서 15분간 원심분리한 후 도말하고, 즉시 95% 에탄올에 고정합니다.
  • ⑤ 도말이 불가능한 때는 검체를 냉장 보관하여(24~48시간 보관가능) 본원으로 보냅니다.
• 05 세침흡인세포검사(fine needle aspiration)
• • ① 유방(breast), 갑상선(thyroid), 림프절(lymphoid tissue), 기타(other) 촉지 종괴 등을 촉지 하여 가장 의심스러운 부위를 선택하여 채취합니다.
  • ② 2~4장의 슬라이드에 도말한 후 건조되지 않도록 신속하게 95% 에탄올에 즉시 고정합니다.
  • ③ 검체량이 적은 경우는 주사바늘과 주사통을 생리식염수로 세정하고 그 내용물을 채취, 원심분 리하여 침전물 슬라이드에 도말 한 후 95% 에탄올로 즉시 고정합니다.

나. 조직병리

01준수사항

• 01 조직은 신체에서 제거되면 자가융해(autolysis)가 시작됩니다. 자가융해 및 부패에 의한 변형 또는 변질을 막기 위해 조직의 고정이 반드시 필요합니다.
• 02 조직을 새지 않는 용기에 옮긴 후 10% 중성 포르말린(Formaline)을 조직 크기의 10~20배 첨가한 다음, 실온에서 12시간 이상 고정합니다.
• 03 포르말린을 사용하는 목적은 적출한 조직의 자가융해 및 건조를 방지하기 위함입니다.
• 04 적출한 조직에 필요 없는 조작은 피해주시고, 조직을 담는 용기에는 환자의 이름, 나이, 성별, 병원명 등의 정보를 기입하여 의뢰하여 주십시오.
• 05 채취부위가 다른 조직이거나 여러 부위에서 적출된 조직일 경우, 부위별로 각각 다른 용기에 넣어 고정하여 보내주십시오.
• 06 Punch biopsy등의 작은 생검조직은 번호별로 거즈나 여과지에 붙여 유실되지 않도록 한 후 고정 하여 보내주십시오.
• 07 적출된 조직에 불필요한 조작은 가능하면 삼가하여 주시고, 건조되지 않도록 고정액을 충분히 넣어 주십시오.
• 08 검체 용기는 가급적 본 재단에서 공급하는 용기를 사용하여 주십시오.

02검체별 고정방법

• 01 큰 장기(장기적출술 예: 자궁, 유방, 위장관 등)
• 절단면을 용기의 아래쪽으로 넣고 고정액에 조직 전체가 충분히 잠기도록(가능하다면 검체의 10~20배부피)넣어 주십시오.
• 02 소화관(내시경적 점막 절제의 경우)
• 점막 부위를 위로 오도록 하여, 점막 부위를 밖으로 뒤집어 스티로폼 등에 편평한 상태를 유지하 도록 펴서 핀 등으로 고정한 후 포르말린에 담가서 보내주십시오.
• 03 작은 생검조직(예 : 위장관의 내시경적 생검, 자궁경부 생검, 유방 생검 등)
• • · 생검조직을 얇은 거즈나 여과지에 붙이거나 싸서 그대로 포르말린에 넣어 보내주십시오.
  • · 포르말린에 넣기 전 조직의 수분을 제거해야 하나, 조직이 너무 작으므로 건조되지 않도록 주의 해야 합니다.